耿海波
(石家莊職業(yè)技術(shù)學(xué)院 食品與藥品工程系,河北 石家莊 050081)
酵母是一類包括釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)和非常規(guī)酵母在內(nèi)的能發(fā)酵糖類的多種單細胞真核微生物的總稱,主要分布在偏酸性含糖量較高的環(huán)境中[1],其中釀酒酵母是工業(yè)生產(chǎn)中重要的微生物類群,它們可合成的天然產(chǎn)物超過100種[2],廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥保健、輕工、能源化工和生命科學(xué)等多個領(lǐng)域,尤其是在發(fā)酵食品和啤酒、葡萄酒等酒精類產(chǎn)品的發(fā)酵方面具有重要的作用[3],現(xiàn)如今全世界酒精年產(chǎn)量已超過一億t[4]。
釀酒酵母在發(fā)酵過程中,尤其是在果酒生產(chǎn)中,經(jīng)常會遇到強酸性、高糖、高酒精環(huán)境,這對酵母的耐酸性能提出了很高的要求。目前,國外科研工作者通過基因重組技術(shù)以獲取耐酸性較強且產(chǎn)量高的釀酒酵母[5-6],但是基因重組技術(shù)獲得的耐酸性能不夠穩(wěn)定。國內(nèi)研究人員通常選擇傳統(tǒng)的篩選方法對釀酒酵母進行選育,同時對釀酒酵母耐酸機理展開研究[7],并將其應(yīng)用于白酒和果酒的生產(chǎn)[8-10]。獲得的釀酒酵母對于糖的利用能力、酒精生產(chǎn)能力、高糖和高酒精環(huán)境耐受性能等方面雖然有了很大的進步[11-12],但是對于耐酸性的高產(chǎn)菌株篩選工作仍有待進一步深化。
本研究采用酸性選擇培養(yǎng)基、氯化三苯基四氮唑(triphenyltetrazolium chloride,TTC)顯色法、杜氏小管發(fā)酵法從實驗室保藏的87株釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)中篩選出耐酸性強的優(yōu)良菌株,并測定其最適生長條件、耐受性及發(fā)酵性能,以期為后續(xù)果酒釀造工作研究提供優(yōu)質(zhì)的菌種[13-14]。
1.1.1 菌株
87株釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)(編號為SC-1~SC-87):為前期研究利用皂素廢水發(fā)酵酒精時篩選并保存于本實驗室的具有一定耐酸性的實驗菌株[15]。
1.1.2 培養(yǎng)基
酵母浸出粉胨葡萄糖(yeastextractpeptonedextrose,YPD)培養(yǎng)基[16]:酵母浸粉10.0 g,蛋白胨20.0 g,溶于900 mL蒸餾水中,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min;另取葡萄糖20.0 g溶于100 mL蒸餾水中,115 ℃高壓蒸汽滅菌15 min后與上述溶液混勻,pH自然。如配制固體培養(yǎng)基另加入20.0 g瓊脂粉。
WL營養(yǎng)瓊脂(wallerstein laboratory nutrient agar,WL)培養(yǎng)基[17]:酵母浸粉4.0 g,蛋白胨5.0 g,KH2PO40.55 g,KCl 0.425 g,CaCl20.125 g,MgSO4·7H2O 0.125 g,F(xiàn)eCl30.002 5 g,MnSO40.002 5 g,瓊脂粉20.0 g,加入溴甲酚綠22.0 mg,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min;另取葡萄糖50.0 g溶于100 mL蒸餾水中,115 ℃高壓蒸汽滅菌15 min后與上述溶液混勻,pH自然。
TTC培養(yǎng)基[18]:TTC上層培養(yǎng)基:葡萄糖0.5 g,瓊脂粉15.0 g,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min,待冷卻后加入TTC 0.5 g。TTC下層培養(yǎng)基:蛋白胨10.0 g,酵母浸粉7.5 g,KH2PO45.0 g,MgSO4·7H2O 2.0 g,檸檬酸1.35 g,氨芐青霉素1.0 g,瓊脂粉30.0 g,溶于900 mL蒸餾水中,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min;另取葡萄糖50.5 g溶于100 mL蒸餾水中,115 ℃高壓蒸汽滅菌15 min后與上述溶液混勻,pH 4.0。
1.1.3 主要試劑
酵母浸粉、蛋白胨、葡萄糖、瓊脂粉、乳酸、無水乙醇、KH2PO4、KCl、CaCl2、MgSO4·7H2O、FeCl3、MnSO4、NaCl:國藥集團化學(xué)試劑有限公司;溴甲酚綠:上海源葉生物科技有限公司;氨芐青霉素:北京索萊寶科技有限公司。實驗所用試劑均為分析純或生化試劑。
YJ-VS-1型單人垂直超凈工作臺:無錫一凈凈化設(shè)備有限公司;LDZX-50L型高壓蒸汽滅菌鍋:上海申安醫(yī)療器械廠;DHP-9602電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海一恒科學(xué)儀器有限公司;BS-2E型恒溫振蕩培養(yǎng)箱:常州恒隆儀器有限公司;UV-1900i型紫外-可見分光光度計:島津企業(yè)管理(中國)有限公司;ME204型電子分析天平、FE22型pH計:梅特勒-托利多國際貿(mào)易(上海)有限公司;PAL-1糖度儀:廣州市愛宕科學(xué)儀器有限公司;A8964酒精計:上海阿拉丁生化科技股份有限公司。
1.3.1 釀酒酵母菌株的活化
在無菌環(huán)境下分別挑取實驗室保藏的87株釀酒酵母,接種到Y(jié)PD固體斜面培養(yǎng)基上,于28 ℃培養(yǎng)24 h;挑取上述菌株移接入100 mL YPD液體培養(yǎng)基中,于28 ℃靜置培養(yǎng)24 h;再移接入100 mL YPD液體培養(yǎng)基中,于28 ℃、160 r/min振蕩培養(yǎng)24 h作為種子液,備用。
1.3.2 優(yōu)良耐酸釀酒酵母菌株的篩選
用乳酸調(diào)節(jié)YPD液體培養(yǎng)基pH值為2.0,按5%(V/V)的接種量接入釀酒酵母種子液,于28 ℃、160 r/min振蕩培養(yǎng)24 h后,取菌懸液劃線于WL固體培養(yǎng)基,于28 ℃恒溫培養(yǎng)24 h,挑取生長狀況較好的典型的單菌落,接種到Y(jié)PD固體斜面保藏,用于后續(xù)篩選[19]。
TTC顯色法篩選[20-21]:用接種環(huán)挑取釀酒酵母菌株在TTC下層培養(yǎng)基表面連續(xù)劃線,于28 ℃培養(yǎng)48 h,將融化并冷卻至45~50 ℃的TTC上層培養(yǎng)基倒入TTC下層培養(yǎng)基表面,于28 ℃培養(yǎng)3 h后,觀察培養(yǎng)基顯色情況,從中篩選出產(chǎn)酒精能力較強的菌株。
杜氏小管發(fā)酵法篩選[22]:取0.5 mL釀酒酵母種子液于裝有10 mL YPD液體培養(yǎng)基的試管中,倒置放入杜氏小管,并避免杜氏小管內(nèi)有氣體存在,密封后于28 ℃靜置培養(yǎng),每隔12 h觀察并記錄杜氏小管內(nèi)產(chǎn)氣情況,篩選出生長和發(fā)酵性能較好的菌株。
1.3.3 優(yōu)良耐酸釀酒酵母菌株生長特征的測定
最適生長溫度:按5%(V/V)的接種量將釀酒酵母種子液接種于100mLYPD液體培養(yǎng)基中,分別于不同溫度(22℃、24 ℃、26 ℃、28 ℃、30 ℃、32 ℃)、160 r/min條件下振蕩培養(yǎng),每組平行三份,以不加菌的YPD液體培養(yǎng)基為對照,培養(yǎng)24 h后使用紫外-可見分光光度計在波長600 nm處測定菌液的OD600nm值。
最適生長pH值:用乳酸調(diào)節(jié)YPD液體培養(yǎng)基的pH值為3.0、3.2、3.4、3.6、3.8、4.0、4.2、4.4、4.6、4.8、5.0,按5%(V/V)的接種量將釀酒酵母種子液接種于100 mL不同pH值的YPD液體培養(yǎng)基中,在最適溫度、160 r/min條件下振蕩培養(yǎng),每組平行三份,培養(yǎng)24 h后測定菌液的OD600nm值。
生長曲線的測定[23]:按最適pH值配制YPD液體培養(yǎng)基,按5%(V/V)的接種量將釀酒酵母種子液接種于100 mL YPD液體培養(yǎng)基中,在最適溫度、160 r/min條件下振蕩培養(yǎng),每組平行三份,每2 h取樣測定菌液的OD600nm值,以發(fā)酵時間(x)為橫坐標(biāo),OD600nm值(y)為縱坐標(biāo)繪制生長曲線。
1.3.4 優(yōu)良耐酸釀酒酵母菌株耐受性的測定
乙醇耐受性測定:按體積比在YPD液體培養(yǎng)基中加入6%、8%、10%、12%、14%、16%、18%無水乙醇,按5%(V/V)的接種量將釀酒酵母種子液接種于100 mL YPD液體培養(yǎng)基中,在最適培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)48 h后測定菌液的OD600nm值。
鹽耐受性能測定[24]:在YPD液體培養(yǎng)基中加入NaCl,使培養(yǎng)基中NaCl含量為10 g/L、30 g/L、50 g/L、70 g/L、100 g/L、150 g/L、200 g/L,按5%(V/V)的接種量將釀酒酵母種子液接種于100 mL YPD液體培養(yǎng)基中,在最適培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)一周,并觀察菌株是否有生長。
糖耐受性能測定[24]:調(diào)整YPD液體培養(yǎng)基中葡萄糖的質(zhì)量濃度分別為200 g/L、300 g/L、400 g/L、500 g/L、600 g/L,按5%(V/V)的接種量將釀酒酵母種子液接種于100 mL YPD液體培養(yǎng)基中,在最適培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)一周,并觀察菌株是否有生長。
1.3.5 優(yōu)良耐酸釀酒酵母菌株發(fā)酵性能的測定[25]
按5%(V/V)的接種量將釀酒酵母種子液接種于100 mL YPD液體培養(yǎng)基中,稱質(zhì)量后在最適培養(yǎng)條件下振蕩培養(yǎng),每24 h稱一次質(zhì)量,按國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 15038—2006《葡萄酒、果酒通用分析方法》測定發(fā)酵力、總糖、總酸、揮發(fā)酸含量及酒精度。
1.3.6 數(shù)據(jù)分析
采用Excel 2019對數(shù)據(jù)進行整理和作圖,數(shù)據(jù)結(jié)果以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”表示。
2.1.1 釀酒酵母菌株耐酸性能的測定
從87株釀酒酵母中篩選得到5株耐酸性能較好的釀酒酵母菌株,分別為菌株SC-6、SC-15、SC-19、SC-55、SC-62,其生長情況見表1。
表1 釀酒酵母菌株耐酸性能的測定結(jié)果Table 1 Determination results of acid tolerance of Saccharomyces cerevisiae strains
2.1.2 釀酒酵母菌株產(chǎn)酒精能力的測定
5株釀酒酵母菌株的產(chǎn)酒精能力見表2。由表2可知,菌株SC-6、SC-15、SC-62的產(chǎn)酒精能力相對較強。
表2 5株釀酒酵母菌株產(chǎn)酒精能力的測定結(jié)果Table 2 Determination results of alcohol production capacity of 5 Saccharomyces cerevisiae strains
2.1.3 釀酒酵母菌株產(chǎn)氣能力的測定
5株釀酒酵母菌株的產(chǎn)氣情況見表3。
表3 5株釀酒酵母菌株產(chǎn)氣能力的測定結(jié)果Table 3 Determination results of gas production capacity of 5 Saccharomyces cerevisiae strains
由表3可知,菌株SC-15和SC-62的產(chǎn)氣能力最強,在24 h時已經(jīng)使杜氏小管中充有一半氣體,在36 h時杜氏小管中已經(jīng)充滿CO2氣體。結(jié)合TTC顯色實驗結(jié)果,故選擇菌株SC-15和SC-62為優(yōu)良耐酸釀酒酵母菌株。
2.2.1 最適生長溫度的測定結(jié)果培養(yǎng)溫度對釀酒酵母SC-15和SC-62生長的影響見圖1。
圖1 培養(yǎng)溫度對兩株釀酒酵母菌株的影響Fig.1 Effects of culture temperature on 2 Saccharomyces cerevisiae strains
由圖1可知,釀酒酵母SC-15和SC-62均在28 ℃時生長最好,OD600nm值達到最大,分別為1.80和1.89。菌株SC-62在26~32 ℃的范圍內(nèi)OD600nm值均高于菌株SC-15,尤其是在30 ℃時,菌株SC-62的OD600nm值與28 ℃時變化不明顯,呈現(xiàn)出更強的溫度適應(yīng)能力。綜上,菌株SC-15和SC-62的最適生長溫度均為28 ℃,且菌株SC-62的溫度適應(yīng)能力更強。
2.2.2 最適生長pH值的測定結(jié)果
培養(yǎng)基初始pH對釀酒酵母SC-15和SC-62生長的影響見圖2。
圖2 初始pH值對兩株釀酒酵母菌株的影響Fig.2 Effects of initial pH value on 2 Saccharomyces cerevisiae strains
由圖2可知,pH值變化對兩株菌生長的影響存在差異,菌株SC-15在初始pH值為3.8~4.8之間生長良好,有較寬的pH值適應(yīng)范圍,其最適pH值為4.4,而菌株SC-62在初始pH值為3.6~4.4之間生長旺盛,最適pH值為4.0。在pH值3.0~4.2范圍內(nèi),菌株SC-62的OD600nm值高于菌株SC-15,說明菌株SC-62具備更強的耐酸特性。綜上,菌株SC-15和SC-62的最適生長pH值分別為4.4、4.0,且菌株SC-62具備更強的耐酸特性。
2.2.3 生長曲線的測定結(jié)果
釀酒酵母SC-15和SC-62的生長曲線見圖3。
圖3 兩株釀酒酵母菌株的生長曲線Fig.3 Growth curves of 2 Saccharomyces cerevisiae strains
由圖3可知,兩株釀酒酵母菌株的生長規(guī)律類似,菌株SC-15在發(fā)酵0~14 h時生長速度較慢,為延滯期;在發(fā)酵14~22 h時進入迅速生長的對數(shù)期,之后進入穩(wěn)定期。與菌株SC-15相比,菌株SC-62的延滯期相對更短,在第12小時時進入對數(shù)期,達到穩(wěn)定期后的OD600nm值也稍高。在生產(chǎn)中延滯期短的菌株適應(yīng)能力更強,可在短時間內(nèi)形成數(shù)量優(yōu)勢,減少染菌機會同時減少副產(chǎn)物的形成,并有利于提高發(fā)酵效率。
2.3.1 耐乙醇性能的測定結(jié)果
釀酒酵母SC-15和SC-62的耐乙醇性能見圖4。
圖4 兩株釀酒酵母菌株耐乙醇性能的測定結(jié)果Fig.4 Determination results of alcohol tolerance of 2 Saccharomyces cerevisiae strains
由圖4可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)在6%~8%時,兩株釀酒酵母生長狀況均良好;當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)>12%之后,兩株菌株受到較大的抑制,OD600nm值急劇下降;當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)>16%之后,兩株菌株的OD600nm值與剛接種時相同,說明釀酒酵母在此環(huán)境中被完全抑制。與菌株SC-15相比,菌株SC-62的耐乙醇性能較好,且優(yōu)于李彥芹等[24-25]研究菌株的耐受性。
2.3.2 耐鹽性能測定結(jié)果
釀酒酵母SC-15和SC-62的耐鹽性能見表4。
表4 兩株釀酒酵母菌株耐鹽性能的測定結(jié)果Table 4 Determination results of salt tolerance of 2 Saccharomyces cerevisiae strains
由表4可知,兩株釀酒酵母均能在NaCl質(zhì)量濃度≤70g/L的YPD液體培養(yǎng)基中生長,當(dāng)NaCl質(zhì)量濃度為100 g/L時,菌株SC-62仍可生長,可見菌株SC-62具有良好的耐鹽性能。
2.3.3 耐糖性能測定結(jié)果
釀酒酵母SC-15和SC-62的耐糖性能見表5。
表5 兩株釀酒酵母菌株耐糖性能的測定結(jié)果Table 5 Determination results of sugar tolerance of 2 Saccharomyces cerevisiae strains
由表5可知,菌株SC-15在葡萄糖質(zhì)量濃度≤400 g/L的YPD液體培養(yǎng)基中生長,而菌株SC-62具有相對更好的耐糖性能,可在葡萄糖質(zhì)量濃度≤500 g/L的YPD液體培養(yǎng)基中生長。
釀酒酵母SC-15和SC-62的發(fā)酵性能見表6。
表6 兩株釀酒酵母菌株發(fā)酵性能的測定結(jié)果Table 6 Determination results of fermentation performance of 2 Saccharomyces cerevisiae strains
由表6可知,菌株SC-62具有更高的發(fā)酵力[5.93 g CO2/(100 mL·24 h)],高于楊寬等[25]的研究結(jié)果,說明此菌株能充分利用培養(yǎng)基中的糖轉(zhuǎn)化為酒精,發(fā)酵后酒精度達到7.55%vol,達到了用于果酒發(fā)酵的要求,產(chǎn)生的揮發(fā)酸含量(0.61 g/L)也低于國標(biāo)GB 15037—2006《葡萄酒》中規(guī)定的葡萄酒中揮發(fā)酸含量≤1.2 g/L的限值,綜合性能優(yōu)于菌株SC-15,相比實驗室保存的原有菌株,菌株SC-62具備更好的耐酸、耐糖性能,同時具有延滯期短、可適應(yīng)較寬的溫度范圍等優(yōu)點,發(fā)酵力強,具備一定的應(yīng)用價值[15]。
本研究采用酸性選擇培養(yǎng)基、TTC顯色法、杜氏小管發(fā)酵法從實驗室保藏的87株釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)中篩選得到2株耐酸性強的優(yōu)良菌株,其中菌株SC-62綜合性能優(yōu)于菌株SC-15,最適生長溫度、pH分別為28 ℃、4.0,可耐受乙醇體積分?jǐn)?shù)14%、NaCl 100 g/L、葡萄糖500 g/L,具有發(fā)酵力[5.93 g CO2/(100 mL·24 h)]強,酒精產(chǎn)量(7.55%vol)高,延滯期(12 h)短、適應(yīng)性強等優(yōu)點。